Agro Bali: Agricultural Journal Vol.
3 No.
2: 210-219.
December 2020 e-ISSN 2655-853X DOI: 10.
37637/ab.
ISOLASI DAN KARAKTERISASI BAKTERI PENGHASIL IAA
(INDOLE ACETIC ACID) DARI RHIZOSFER TANAMAN AKASIA (Acacia mangiu.
Ika Agus Rini1C.
Indah Oktaviani1.
Muhammad Asril1.
Revi Agustin1.
Fina Khaerunissa Frima2 1Program Studi Biologi.
Jurusan Sains.
Institut Teknologi Sumatera 2Program Studi Kimia.
Jurusan Sains.
Institut Teknologi Sumatera Jl.
Terusan Ryacudu.
Way Huwi.
Kec.
Jati Agung.
Kabupaten Lampung Selatan.
Lampung 35365 CEmail korespondensi: ika.
rini@bi.
Abstract.
IAA is the most common product of L-tryptophan metabolism which can be produced by some Some microorganisms that have the potential to produce IAA are rhizosphere bacteria in Leguminosae plants, one of which is acacia.
Acacia mangium, also known as acacia, is a fast growing tree.
However, acacia is an invasive plant.
Acacia plants have nodules which are the result of a symbiosis of plant roots and bacteria.
This symbiosis can affect soil fertility.
A lot of potential can be extracted from soil bacteria, especially in the The purpose of this study was to isolate and identify bacteria in the rhizosphere of acacia plants capable of producing IAA as one of the potential candidates for PGPR (Plant Growth Promoting Rhizobacteri.
The methods used include sampling, isolation of IAA-producing bacteria, bacterial purification, identification of bacteria and biochemical tests, making of bacterial growth curves, and testing of phosphate solubilizing bacteria isolates.
The rhizosphere isolates obtained 23 bacterial isolates.
Based on the results of bacterial identification based on Gram staining, these bacteria entered the genus Bacillus and there were 5 bacterial isolates that had the ability to produce IAA and dissolve phosphate so that these bacteria had potential as biological fertilizers.
Keywords: Acacia, rhizosfer, bacteria.
IAA, biofertilizer.
Abstrak.
IAA adalah produk paling umum dari metabolisme L-triptofan yang dapat diproduksi oleh beberapa Beberapa mikroorganisme yang memiliki potensi menghasilkan IAA adalah bakteri rhizosfer pada tanaman Leguminosae, salah satunya adalah akasia.
Acacia mangium, juga dikenal sebagai akasia, adalah pohon yang tumbuh cepat.
Namun, akasia adalah tanaman invasif.
Tanaman akasia memiliki bintil yang merupakan hasil simbiosis akar tanaman dan bakteri.
Simbiosis ini dapat mempengaruhi kesuburan tanah.
Banyak potensi yang dapat digali dari bakteri tanah, khususnya di rhizosfer.
Tujuan dari penelitian ini adalah untuk mengisolasi dan mengidentifikasi bakteri pada rizosfer tanaman akasia yang mampu menghasilkan IAA sebagai salah satu potensi untuk kandidat PGPR (Plant Growth Promoting Rhizobacteri.
Metode yang digunakan meliputi pengambilan sampel, isolasi bakteri penghasil IAA, pemurnian bakteri, identifikasi bakteri dan uji biokimia, pembuatan kurva tumbuha bakteri, dan uji isolat bakteri pelarut fosfat.
Hasil isolasi bakteri rhizosfer diperoleh sebanyak 10 isolat bakteri yang memiliki karakteristik berbeda secara morfologi.
Berdasarkan hasil identifikasi bakteri berdasarkan pewarnaan Gram, bakteri tersebut masuk ke dalam genus Bacillus dan terdapat 5 isolat bakteri yang memiliki kemampuan menghasilkan IAA dan melarutkan fosfat sehingga bakteri tersebut memiliki potensi sebagai pupuk hayati.
Kata kunci: Acacia, rhizosfer, bacteria.
IAA, pupuk hayati.
PENDAHULUAN
Indole Acetic Acid (IAA) merupakan salah satu auksin yang paling aktif secara fisiologis.
IAA adalah produk paling umum dari metabolisme L-triptofan dari beberapa Produksi auksin oleh bakteri adalah salah satu mekanisme langsung terpenting yang digunakan oleh bakteri pemacu pertumbuhan tanaman (PGPB) untuk kemajuan tanaman secara alami karena auksin adalah metabolit sekunder ramah tanaman yang disintesis secara alami oleh bakteri, dan tanaman terkait (Wagi & Ahmed, 2.
IAA
merangsang pemanjangan sel memodifikasi kondisi fisiologis tertentu seperti, peningkatan osmotik sel, meningkatkan permeabilitas air ke dalam sel, penurunan tekanan dinding sel, peningkatan sintesis dinding sel dan menginduksi RXA spesifik dan sintesis protein.
IAA juga memiliki kemampuan memicu aktivitas embial, menghambat atau menunda absisi daun, menyebabkan pembungaan dan (Zhao.
Beberapa mikroorganisme termasuk dari golongan Plant Growth-Promoting Rhizobacteria (PGPR) dapat memproduksi IAA.
Produksi IAA merupakan kemampuan utama dari bakteri rhizosfer yang dapat merangsang dan pertumbuhannya (Mohite, 2.
PGPR
Agro Bali: Agricultural Journal Vol.
3 No.
2: 210-219.
December 2020 mampu menghasilkan zat pengatur tumbuh atau Kemampuan bakteri untuk menghasilkan zat fitohormon yang merupakan mekanisme penting pada PGPR.
Senyawa ini berperan sebagai sinyal dan regulator pertumbuhan pada tanaman seperti IAA, giberelin dan sitokinin (Harca et al.
, 2.
Beberapa spesies bakteri yang berasal dari perakaran dan tanah dapat berperan sebagai pestisida, fungisida, biofertilizer, dan memiliki kemampuan dalam memacu pertumbuhan tanaman (Madigan et al.
, 2.
Selain memproduksi IAA, bakteri rhizosfer juga mampu melarutkan fosfat dan sebagai agen biokontrol dengan cara menginduksi sistem kekebalan tanaman (Marista et al.
, 2.
Akasia mangium (Acacia mangiu.
merupakan tanaman yang dapat tumbuh dengan cepat dan merupakan pohon yang tahan terhadap kondisi tanah alkalin dan miskin hara (Hidayati et al.
, 2.
mangium merupakan jenis tanaman pioneer yang tidak memerlukan persyaratan tinggi atau khusus untuk tumbuh.
Tanaman ini mampu tumbuh dan beradaptasi dengan baik pada kondisi klimatis yang berbeda dengan habitat aslinya.
Akan tetapi banyak faktor lingkungan yang akan (Krisnawati et al.
, 2.
mangium dapat tumbuh di lahan marginal seperti bekas pertambangan dan termasuk jenis tanaman yang paling cocok ditanaman, hal ini menjadikan mangium tanaman potensial untuk bioremediasi (Robika & Sari, 2.
mangium terbukti bermanfaat dalam sistem agroforestri karena memulihkan dan mempertahankan kesuburan tanah karena kemampuannya dalam mengikat nitrogen.
mangium membentuk simbiosis asosiasi dengan bakteri bintil akar (Perrineau et al.
Terdapat beberapa langkah bakteri bintil akar dapat masuk ke dalam akar, salah satunya melalui epidermis akar dan ada beberapa penelitian yang menyatakan infeksi bakteri yang berhubungan dengan gen nod (Bonaldi et , 2.
mangium diketahui melakukan simbiosis dengan bakteri tanah dari genus Rhizobium.
Sehingga selain bioremediasi lahan e-ISSN 2655-853X DOI: 10.
37637/ab.
marginal, potensi mangium dapat dijadikan sebagai sumber bakteri rhizosfer yang dapat digunakan sebagai pupuk hayati.
Oleh karena itu dalam penelitian ini dilakukan isolasi dan identifikasi bakteri rhizosfer dari perakaran A.
Bakteri rhizosfer yang telah diisolasi dan dikarakterisasi diharapkan memiliki kemampuan dalam menghasilkan IAA dan melarutkan fosfat.
Sehingga dalam penelitian ini akan didapatkan bakteri potensial yang dapat menjadi kandidat pupuk hayati.
Indonesia belum banyak hasil penelitian yang melakukan isolasi dan identifikasi bakteri penghaisl IAA dan pelarut fosfat dari rhizosfer Oleh sebab itu hasil penelitian ini akan memberikan gambaran baru tentang potensi bakteri rhizosfer perakaran mangium.
METODE
Penelitian Laboratorium Biologi Institut Teknologi Sumatera yang dilaksanakan dari bulan Juli Ae September 2020.
Pengambilan Sampel Pengambilan sampel tanah Acasisa dilakukan pada kedalaman 5-20 cm (Gagelidze et al.
dengan menggunakan spatula yang sudah Tanah yang sudah diambil kemudian dimasukkan ke dalam alumuinium steril dan diberi label sesuai dengan jenis sampel dan lokasi pengambilan.
Lokasi pengambilan sampel tanah berada di titik koordinat 5A2126.
4S 105A18 57.
0E dan 5A2145.
4S 105A18 39.
9E yang merupakan lahan penghijauan di kampus ITERA.
Isolasi Bakteri Penghasil IAA Isolasi bakteri yang berpotensi menghasilkan IAA menggunakan media NB (Nutrient Brot.
dan ditambah dengan L-triptofan sebanyak 0,1% (Kumari et al.
, 2.
Sebanyak 10 g tanah dimasukkan ke dalam 100 ml NB Ltriptofan .
,1%) kemudian diinkubasi goyang selama 24 jam dengan kecepatan 120 rpm dalam suhu 30EE.
Kultur pengkayaan tersebut diambil 1 ml lalu dimasukkan ke dalam tabung reaksi yang berisi akuades sebanyak 9 ml (Larosa et al.
, 2.
Dilakukan pengenceran berseri hingga tingkat Agro Bali: Agricultural Journal Vol.
3 No.
2: 210-219.
December 2020 Setelah pengenceran, diambil 0,1 ml dari pengenceran 10-4 hingga 10-8 kemudian ditumbuhkan pada media Nutrient Agar (NA) yang sudah ditambahkan L-triptofan sebanyak 0,1% (Raut et al.
, 2.
Kemudian dilakukan inkubasi selama 24 jam pada suhu 30EE.
Identifikasi dan Karakterisasi Semua koloni yang tumbuh dilakukan peremajaan untuk mendapatkan kultur murni.
Bakteri yang diremajakan adalah bakteri yang mempunyai karakteristik morfologi yang berbeda antar bakteri lainnya seperti bentuk koloni, warna koloni, tepian koloni, dan elevasi koloni (Cappuchino & Sherman, 2.
Selain itu dilakukan uji biokimia dan identifikasi menggunakan pewarnaan Gram.
Uji biokimia yang dilakukan antara lain uji sitrat, katalase, motilitas.
TSIA dan hidrolisa pati.
Uji Kemampuan Penghasil IAA Satu lup koloni bakteri dimasukkan ke dalam 50 ml media NB L-triptofan 0,1%.
Kemudian diinkubasi goyang selama 24 jam dengan kecepatan 120 rpm.
Setelah 24 jam, diambil 1 ml inokulum dan dimasukkan ke dalam 100 ml media NB L-triptofan 0,1% lalu diinkubasi goyang selama 6 hari dengan kecepatan 120 Uji kemampuan penghasil IAA dilakukan setiap hari dengan mengambil 10 ml inokulum bakteri kemudian disentrifugasi dengan kecepatan 6000 rpm selama 30 menit.
Setelah disentrifugasi, diambil 1 ml supernatan dimasukkan pada tabung reaksi yang sudah dilapisi dengan aluminium foil.
Ditambahkan 4 ml larutan Salkovwski .
ml H2SO4, 250 ml aquades, 7,5 ml 0,5M FeCl3.
6H2O) dan diinkubasi selama 30 menit pada ruang gelap (Patten & Glick, 2.
Kadar konsentrasi IAA diukur dengan menggunakan spektrofotometer pada panjang gelombang 535 nm (Sharma & Rai, 2.
Konsentrasi IAA dihitung melalui perbandingan nilai pengukuran dengan kurva Uji Pelarutan Fosfat Uji kemampuan bakteri dalam melarutkan fosfat dilakukan dengan menumbuhkan isolat bakteri yang telah dimurnikan pada media e-ISSN 2655-853X DOI: 10.
37637/ab.
Pikovskaya padat yang mengandung .
g C6H12O6, 5 g Ca3(PO.
2, 0,5 g (NH.
SO4, 0,2
g KCl, 0,1 g MgSO4.
7H2O, 0.
MnSO4.
7H2O, 0,002 g FeSO4.
7H2O, 0,1 g NaCl, 0,5 g yeast extract, dan 20 g agar yang dilarutkan dalam 1000 ml akuades dengan cara ditotolkan dan diinkubasi selama 7 hari pada suhu 30EE (Asril & Lisafitri, 2.
Pertumbuhan koloni bakteri pelarut fosfat (P) ditandai dengan pembentukan zona bening di sekitar koloni bakteri.
Zona bening yang terbentuk di sekitar koloni diukur dan dihitung indeks kelarutan fosfat pada masing-masing koloni dengan persamaan sebagai berikut:
yccycnycaycoyceycyceyc ycycuycuyca ycayceycuycnycuyci Oe yccycnycaycoyceycyceyc ycoycuycoycuycuycn ycaycaycoycyceycycn
yccycnycaycoyceycyceyc ycoycuycoycuycuycn ycaycaycoycyceycycn
HASIL DAN PEMBAHASAN
Hasil isolasi bakteri rhizosfer dari perakran Acasia mangium didapatkan 10 isolat bakteri yang dapat dikarakterisasi dan dimurnikan (Tabel .
Sepuluh isolat bakteri tersebut memiliki karakteristik yang berbeda satu sama lain sehingga dilakukan identifikasi dan uji lebih lanjut.
Identifikasi dan Karakterisasi Bakteri Hasil karakterisasi menunjukkan 5 koloni bakteri memiliki bentuk irregular.
Pada pewarnaan Gram semua bakteri memiliki bentuk batang dan menunjukkan warna ungu yang berarti Gram positif.
Selain pewarnaan Gram, karakterisasi yang juga dilakukan adalah uji biokimia.
Berdasarkan hasil uji sitrat, 8 dari 10 bakteri dapat menggunakan sitrat sebagai sumber karbonnya yaitu pada isolat AM1.
AM1.
AM1.
AM1.
7b AM1.
AM1.
AM1.
6a, dan AM2.
sedangkan pada isolat AM1.
4a dan AM1.
7a menunjukkan hasil negatif terhadap metabolisme sitrat.
Pada uji motilitas 10 isolat bakteri menunjukkan hasil negatif yang artinya tidak terdapat pergerakan bakteri didalam media SIM (Sulphide Indole Motilit.
Berdasarkan hasil uji hidrolisa pati, terdapat 6 isolat bakteri (AM1.
AM1.
AM1.
AM1.
AM1.
4a, dan AM1.
dapat membentuk zona bening setelah diteteskan dengan iodine.
Adanya zona bening Agro Bali: Agricultural Journal Vol.
3 No.
2: 210-219.
December 2020 di sekeliling isolat yang mengindikasikan isolat bakteri dapat memproduksi enzim amilase sehingga di daerah tersebut terjadi hidrolisis amilum (Cappucino, 1.
Berdasarkan hasil pada uji katalase, sepuluh isolat bakteri menghasilkan gelembung setelah diteteskan oleh H2O2 konsentrasi 3%.
Hal ini menunjukkan bahwa isolat tersebut mampu menghasilkan enzim katalase yang dapat memecah hidrogen peroksida (H2O.
menjadi air dan oksigen (Huda & Salni, 2.
Berdasarkan hasil yang diperoleh dari uji TSIA, 10 isolat bakteri dapat memfermentasi glukosa yang digunakan sebagai sumber energi.
Media TSIA mengandung 3 macam gula yaitu glukosa, laktosa dan sukrosa, sehingga dengan uji TSIA dapat diketahui kemampuan bakteri dalam memfermentasi jenis gula tersebut.
Hampir semua organisme membutuhkan glukosa sebagai sumber energi utama dan proses metabolisme, adanya glukosa dalam media dapat meningkatkan produksi dan laju biomassa pertumbuhan bakteri (Arora et al.
Pada 2 isolat bakteri (AM1.
4 dan AM1.
terdapat endapan berwarna hitam, endapan tersebut menunjukkan bahwa bakteri mampu menghasilkan Hidrogen Sulfida (H2S).
H2S akan bereaksi dengan fem sitrat sehingga fersous sulfide menyebabkan warna hitam pada agar.
Tiga isolat bakteri (AM1.
AM1.
7a, dan AM1.
terdapat keretakan pada media yang berarti pada ketiga isolat bakteri tersebut memiliki kemampuan dalam menghasilkan gas sehingga menyebabkan media retak dan terangkat (Tabel Isolat bakteri PGPR dari rizosfer kebun karet rakyat memiliki ciri-ciri biokimia yaitu oksidase negatif, uji motilitas positif dan negatif, serta uji fermentasi glukosa negatif dan positif (Wagi & Ahmed, 2.
Gram positif, katalase positif (Kumar et al.
, 2.
Bakteri dari berbagai genus telah diidentifikasi memiliki kemampuan PGPR, di antaranya genus yang paling dominan adalah adalah Bacillus dan Pseudomonas spp.
(Beneduzi et , 2.
Kemampuan Rhizobakter Penghasil IAA Hasil penelitian menunjukkan bahwa dari 10 isolat bakteri hanya 7 isolat yang e-ISSN 2655-853X DOI: 10.
37637/ab.
memiliki kemampuan dalam menghasilkan hormon IAA.
IAA yang diperoleh dari sampel penelitian merupakan kalibrasi dari absorbansi yang diukur dan dibandingkan dengan absorbansi kurva standard IAA.
Produksi IAA mulai terlihat pada hari pertama dan mencapai produksi tertinggi pada hari keempat kecuali pada isolat AM1.
AM1.
8b dan AM1.
Konsentrasi IAA tertinggi mencapai 191,75 .
g/L) dari isolat dengan kode AM2.
(Gambar .
Isolat AM2.
4c memiliki karakteristik daat memnfaatkan sitrat sebagai sumber energi, katalase positif dan mampu memfermentasi glukosa, memiliki bentuk batang dan Gram posistif.
Karakteristik tersebut merupakan karakteristik yang umum ditemui dalam bakteri yang memiliki kemampuan PGPR yaitu salah satunya menghasilkan IAA (Kumar et al.
, 2.
Pada kurva pertumbuhan bakteri tersebut memasuki fase stasioner dimulai pada hari kedua akan tetapi produksi IAA tertinggi berada di hari keempat (Gambar .
Kemampuan mikroba dalam menghasilkan IAA dipengaruhi oleh jenis spesies dari mikroorganisme tersebut.
Mikroorganisme yang sama tidak dapat menghasilkan kadar IAA yang sama (Wulandari et al.
, 2.
Diantara beberapa genus bakteri, genus Bacillus mampu mensintesis IAA dengan jumlah yang bervariasi dalam medium cair (Kavamura et al.
Tiga dari sepuluh isolat bakteri yang dipilih tidak mampu menghasilkan IAA yaitu pada isolat AM1.
AM1.
6a dan AM1.
Hal ini dikarenakan dalam proses produksi IAA pada bakteri sangat dipengaruhi oleh tingkat pertumbuhan (Agustian et al.
, 2.
Hormon IAA yang dihasilkan oleh bakteri melimpah pada fase stasioner dan produksi IAA akan meningkat pada kondisi pertumbuhan bakteri yang menurun.
Hal ini dikarenakan ketersediaan karbon yang terbatas di dalam media pertumbuhan dan kondisi lingkungan pH asam yang terjadi pada saat fase stasioner (Dewi, 2.
Pada media pertumbuhan bakteri untuk produksi IAA ditambahkan dengan L-triptofan dengan konsentrasi 0,1%.
Penambahan triptofan tersebut pada medium pertumbuhan Agro Bali: Agricultural Journal Vol.
3 No.
2: 210-219.
December 2020 merupakan faktor penting bagi isolat untuk melakukan biosintesis IAA.
Triptofan merupakan prekursor biosintesis IAA pada bakteri melalui jalur Indole-Pyruvate Acid (IPA) (Zhao, 2010.
Mashiguchi et al.
, 2.
Hormon IAA merupakan zat pengatur tumbuh yang berperan dalam proses pertumbuhan IAA yang dihasilkan oleh mikroba yang berada di rizosfer dapat meningkatkan jumlah rambut akar, ukuran, dan jumlah akar adventif tanaman (Ribeiro & Cardoso, 2.
Hormon IAA disintesis sebagai metabolit sekunder yang dihasilkan dalam kondisi pertumbuhan bakteri suboptimal atau saat tersedia prekursor asam amino triptofan.
Biosintesis IAA oleh bakteri, dapat ditingkatkan dengan penambahan L-tryptofan sebagai prekusor ke dalam media tumbuh Triptofan telah dibuktikan merupakan prekursor fisiologis dalam biosintesis auksin baik pada tanaman maupun mikroorganisme (Li et al.
, 2018.
Nonhebel, 2.
Jalur biosintesis IAA pada bakteri dapat melalui beberapa jalur, salah satunya dapat melalui jalur Indole-3-pyruvate.
Pada jalur ini terjadi pengubahan triptofan menjadi IpyA oleh Kemudian IpyA mengalami dekarboksilasi menjadi indole-3-acetaldehyde (IAAI.
indole-3-pyruvat decarboxyase (IPDC).
Fase terakhir pada jalur biosintesis ini adalah oksidasi IAAId menjadi IAA (Lin et al.
, 2.
Kemampuan Melarutkan Fosfat Hasil penelitian menunjukkan terdapat bakteri yang mampu melarutkan fosfat.
Hasil tersebut diperoleh 5 isolat bakteri yang berpotensi melarutkan fosfat.
Isolat bakteri yang mampu melarutkan fosfat ditandai dengan terbentuknya zona bening di sekitar koloni bakteri ketika ditumbuhkan pada medium Pikovskaya padat.
Uji kemampuan bakteri dalam melarutkan fosfat ditandai dengan terbentuknya zona bening pada sekitar koloni bakteri yang diuji pada media Pikovskaya karena pecahnya Ca3(PO.
2 yang terdapat pada media e-ISSN 2655-853X DOI: 10.
37637/ab.
Pikovskaya (Pambudi et al.
, 2.
Bakteri memiliki kemampuan yang berbeda dalam melarutkan fosfat.
Hal ini disebabkan karena setiap mikroba pelarut fosfat menghasilkan jenis dan jumlah asam organik yang berbeda.
Asam-asam mikroorganisme berbeda-beda kualitas dan kuantitasnya dalam membebaskan fosfat.
Bakteri pelarut fosfat (PSB.
mengubah P yang tidak tersedia .
aik Pi dan P.
menjadi P yang tersedia untuk memenuhi kebutuhan tanaman melalui perombakan dan penyerapan (Chen & Liu, 2.
Ukuran koloni tidak selalu berpengaruh terhadap terbentuknya zona bening di sekitar koloni tersebut, karena ukuran diameter koloni yang besar tidak selalu menghasilkan diameter zona bening yang Pada prinsipnya luas zona bening dapat menunjukkan kemampuan bakteri dalam melarutkan fosfat akan tetapi tidak dapat menunjukkan jumlah konsentrasi fosfat yang terlarut di dalam medium.
Isolat bakteri yang membentuk zona bening lebih cepat dan memiliki nilai Indek Pelarut (IP) yang luas merupakan bakteri pelarut fosfat yang berpotensi sebagai AubiofertilizerAy dengan cara melarutkan unsur fosfat yang terikat dengan unsur lain seperti Fe.
Al.
Ca, dan Mg sehingga unsur fosfat menjadi tersedia (Widawati & Suliasih, 2.
Biofertilizer yang terdiri dari konsorsium bakteri yang memiliki kemampuan untuk melarutkan fosfat, melarutkan potasium dan menghasilkan auksin dapat memiliki potensi tinggi untuk peningkatan pertumbuhan dan hasil panen (Leaungvutiviroj et al.
, 2.
Isolat bakteri dengan kode AM1.
4 dan AM1.
merupakan isolat bakteri yang berpotensi menjadi pupuk hayati karena kedua isolat bakteri tersebut lebih cepat membentuk zona bening dibandingkan dengan 5 isolat lainnya yaitu AM1.
AM1.
AM1.
AM1.
AM2.
Meskipun bakteri isolat AM2.
memiliki kemampuan dalam menghasilkan IAA dengan konsentrasi tertinggi, hal ini perlu dilakukan uji lebih lanjut utnuk mengetahui potensi isolat-isolat terpilih.
Agro Bali: Agricultural Journal Vol.
3 No.
2: 210-219.
December 2020 e-ISSN 2655-853X DOI: 10.
37637/ab.
Tabel 1.
Karakterisasi Morfologi Koloni dan Sel Bakteri Karakterisasi Isolat Bentuk AM1.
AM1.
AM2.
AM1.
AM1.
AM1.
AM1.
AM1.
AM1.
AM1.
Morfologi Koloni Tepi Elevasi Warna putih kekuningan putih susu raised ungu tua undulate raised bening kebiruan raised putih susu raised putih kekuningan undulate raised putih raised kuning bening raised putih susu undulate raised putih Gram Morfologi Sel Bentuk Tabel 2.
Hasil Uji Biokimia Bakteri Motilitas Hidrolisa Pati Katalase Glukosa Sukrosa Laktosa Endapan Keretakan Isolat Sitrat Uji TSIA AM1.
AM1.
AM2.
AM1.
AM1.
AM1.
AM1.
AM1.
AM1.
AM1.
Agro Bali: Agricultural Journal Vol.
3 No.
2: 210-219.
December 2020 e-ISSN 2655-853X DOI: 10.
37637/ab.
Kurva Pengukuran Kadar IAA Rata-rata Konsentrasi .
g/L) AM1.
AM1.
AM1.
AM1.
AM1.
AM1.
AM1.
AM1.
AM1.
AM2.
Hari Ke- Gambar 1.
Kurva hasil pengukuran hormon IAA Kurva Pertumbuhan Bakteri Log Jumlah sel/ml AM1.
AM1.
AM1.
AM1.
AM1.
AM1.
AM2.
Hari Ke- Gambar 2.
Kurva pertumbuhan bakteri rizosfer perakaran Acacia mangium.
Agro Bali: Agricultural Journal Vol.
3 No.
2: 210-219.
December 2020 e-ISSN 2655-853X DOI: 10.
37637/ab.
Indeks Pelarutan Fosfat Rata-rata Indeks Pelarutan Fosfat AM1.
AM1.
AM1.
AM1.
AM1.
AM1.
AM2.
Hari Ke- Gambar 3.
Kurva indeks pelarutan fosfat bakteri rizosfer perakaran Acacia mangium.
SIMPULAN
DAFTAR PUSTAKA